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Ⅰ.肺癌の診断
文献検索と採択

- 推 奨
a.EGFR遺伝子検査は,非小細胞肺癌におけるEGFR-TKI治療の適応を決定するために行うよう勧められる。(グレードA)
b.EGFR遺伝子検査は,EGFR-TKI使用歴のあるEGFR遺伝子変異陽性非小細胞肺癌におけるオシメルチニブ単剤治療の適応を決定するために行うよう勧められる。(グレードA)
c.EGFR遺伝子検査は,原則的に腺癌成分を有する組織型において行うよう勧められる。(グレードB)
d.生検や細胞診などの微量な試料においては,腺癌が含まれない組織型でも,EGFR遺伝子検査を行うことを考慮してよい。(グレードC1)
e.EGFR遺伝子検査は,確立された高感度法にて行うよう勧められる。(グレードB)
*EGFR遺伝子検査に関しては,日本肺癌学会「肺癌患者におけるEGFR遺伝子変異検査の解説」(日本肺癌学会ホームページ:各種ガイドラインhttp://www.haigan.gr.jp)を参照すること。
- a.
- IPASS試験1)において,臨床背景(組織型,人種,喫煙の有無)ではなく,EGFR遺伝子変異の有無がEGFR-TKIであるゲフィチニブの効果予測因子(ゲフィチニブの抗腫瘍効果は,EGFR変異例で72.1%,EGFR野生型で1.1%)であることが明瞭に示された。またEGFR変異を有する症例のみを対象とした複数の第Ⅲ相試験(WJOG3405試験2)・NEJ002試験3)・OPTIMAL試験4)・EURTAC試験5)・LUX-Lung3試験・LUX-Lung6試験6))において,いずれもEGFR-TKI単剤(ゲフィチニブ,エルロチニブ,アファニチブ)がプラチナ製剤併用療法と比較してPFSの有意な延長をもたらすことが報告された。したがってEGFR遺伝子検査は,EGFR-TKI治療の適応を決定するために行うよう勧められる。また,ゲフィチニブとアファニチブにおいては添付文書上,EGFR遺伝子変異検査を実施すること,と明記されており,本検査は必須とされる。
なお,これらの第Ⅲ相臨床試験は,EGFR-TKIと殺細胞性抗癌剤との治療効果のランダム化比較試験としてのエビデンスレベルⅡである。IPASS試験は臨床背景で選択した症例を対象にし,他の試験はEGFR遺伝子変異陽性例を対象とした試験であり,EGFR遺伝子変異の有無を層別因子とした比較試験ではない。 - b.
- EGFR-TKIを含む治療後に増悪したEGFR遺伝子変異陽性進行非小細胞肺癌症例を対象とした第Ⅰ/Ⅱ相試験において,オシメルチニブはEGFR T790M変異陽性例で奏効率が61%,無増悪生存期間が9.6カ月と良好な成績が報告された7)。また,EGFR-TKIを含む治療後に増悪したEGFR T790M変異陽性進行非小細胞肺癌症例を対象とした第Ⅱ相試験においても,奏効率71%,無増悪生存期間8.6カ月と良好な成績が報告されている8)。したがってT790Mを含むEGFR遺伝子検査は,オシメルチニブによる治療の適否を決定するために行うよう勧められる。また,オシメルチニブの添付文書上,EGFR T790M変異陽性が確認された患者に投与すること,と明記されており,本検査は必須とされる。
- c・d.
- 腺癌以外の組織型,特に扁平上皮癌におけるEGFR変異陽性率は0~5%と報告されており9)~13),腺癌と比較すると極めて稀である。さらに手術検体において,免疫染色でΔNp63+/TTF1-をもって扁平上皮癌であることが確認された95症例においては1例もEGFR変異陽性例がなく,当初組織学的に扁平上皮癌と診断されたEGFR変異陽性例10例において,形態および免疫染色による再評価を行ったところ,7例が腺扁平上皮癌,2例が扁平上皮様形態を伴う低分化腺癌で,1例が分類不能であったと報告された14)。したがって,腺癌成分をまったく含まない症例におけるEGFR遺伝子検査は有用でない可能性が高く,腺癌もしくは腺癌組織をわずかでも有する組織型において行うよう勧められる。しかし,生検試料や細胞診試料などの微量なサンプルにおいては,全体像を把握することは困難であり腺癌成分の完全な除外を行うことはできないため,腺癌以外の組織型と診断された症例においても,臨床背景も考慮し,EGFR遺伝子検査を行うことを考慮してもよい。
- e.
- EGFR遺伝子検査としては,直接塩基配列(ダイレクトシーケンス)法の他,これまでPCRを用いた高感度の検出法を中心として多くの報告がある15)~21)。検体としては,手術検体,生検検体,気管支洗浄液,胸水,心嚢液,気管支擦過細胞診や吸引細胞診を用いることができるが,特に手術検体以外を検体として用いる場合は,癌細胞含有率が10%以下でも検出できる高感度な検査法が望ましい。検出感度は直接塩基配列法が25%程度とされているのに対し,現在本邦における検査会社で施行可能なPNA-LNA PCR Clamp法15),Scorpion-ARMS法19),Cycleave PCR法18),PCR-invader法20),Cobas法21)などは1~5%で,いずれの方法でも細胞診検体での検出率はほぼ同等であったと報告されており22)23),これらの確立された高感度検出法を用いることが推奨される。
- 推 奨
a.ALK遺伝子検査は,ALK阻害剤による治療の適否を決定するために行うよう勧められる。(グレードA)
b.ALK遺伝子検査は,原則的に腺癌成分を有する組織型において行うよう勧められる。(グレードB)
c.生検や細胞診などの微量な試料においては,腺癌が含まれない組織型でも,ALK遺伝子検査を行うことを考慮してよい。(グレードC1)
d.ALK遺伝子検査法としては,IHC法,FISH法,RT-PCR法の少なくとも2つ以上の方法によりALK遺伝子の存在を確認することが勧められる。(グレードB)
*ALK遺伝子検査に関しては,日本肺癌学会「肺癌患者におけるALK遺伝子検査の手引き」(日本肺癌学会ホームページ:各種ガイドラインhttp://www.haigan.gr.jp)を参照すること。
- a.
- ALK遺伝子24)を有する非小細胞肺癌症例を対象とした第Ⅲ相試験において,クリゾチニブ単剤がプラチナ製剤併用療法と比較してPFSの有意な延長をもたらすことが報告された25)。EGFR遺伝子検査と同様に,ALK遺伝子検査は,ALK阻害剤による治療の適否を決定するために行うよう勧められる。また,ALK阻害剤であるクリゾチニブとアレクチニブの添付文書上,ALK融合遺伝子陽性が確認された患者に投与すること,と規定されており,本検査は必須とされる。
- b・c.
- ALK遺伝子においても,EGFR遺伝子変異と同様に扁平上皮癌をはじめ腺癌成分をまったく含まない症例における陽性頻度は極めて低く26)~32),ALK遺伝子検査は腺癌もしくは腺癌組織をわずかでも有する組織型において行うよう勧められる。ただし,生検試料や細胞診試料などの微量なサンプルにおいては,全体像を把握することは困難であり腺癌成分の完全な除外を行うことはできないため,腺癌以外の組織型と診断された症例においても,臨床背景も考慮し,ALK遺伝子検査を行うことを考慮してもよい。なお,ALK遺伝子とEGFR遺伝子変異とは排他的な関係にあり,同時に異常を有する可能性は極めて低い。したがって,ALK遺伝子検査は,EGFR遺伝子変異陰性例を対象とするなど,状況に応じたALK遺伝子検査を行うことが勧められる。
- d.
- ALK遺伝子検査としては,FISH法,IHC法,RT-PCR法が報告されている。検体としては,手術検体,生検検体,気管支洗浄液,胸水,心嚢液,気管支擦過細胞診や吸引細胞診検体などを用いることが可能であるが,液性検体ではFISH法あるいはIHC法を施行するためにセルブロックを作成することが推奨される。FISH法については,最も確立された検査法で,これまでの臨床試験においてもALK遺伝子陽性症例の診断根拠として用いられており,標準検査と考えられる25)33)。しかし一方で高価な検査法であり,かつ感度・特異度の面でスクリーニング検査としては不適という指摘もある34)。IHC法については,スクリーニング検査に適しているが,ALK遺伝子の発現は微量のため通常の染色法では検出が困難であることから,高感度のIHC法が開発されてきた26)28)35)~37)。したがって,高感度IHC法によりスクリーニングを行い,FISH法により確認を行うことが勧められるが,現時点ではFISH法とIHC法の結果に不一致があることも報告されており,それぞれの結果に基づく治療効果との関連も含めた今後の解析が待たれる。RT-PCR法は既知のALK遺伝子の確認としては確実な方法であるが24),未知の融合遺伝子は検出できないこと,また高品質のRNAが必要なため,通常のホルマリン固定パラフィン包埋標本での解析は困難で,検体採取時点であらかじめRNA用の検体処理を施す必要があることから,現時点では推奨度は低いが,組織採取が困難で気管支洗浄液など細胞診検体しか得られないような症例では有用となる可能性がある。以上,それぞれの検査法には長所・短所があり,1つのみの検査法では偽陽性・偽陰性の可能性があることから,得られた検体種に応じてこれらを組み合わせて,2つ以上の方法によりALK遺伝子の存在を確認することが勧められる。なお,アレクチニブの使用にあたっては,添付文書上,体外診断用医薬品として承認されているFISH法およびIHC法を用いて,ALK融合遺伝子の存在を確認するよう明記されている。
- 推 奨
a.PD-L1 IHC検査は,EGFR遺伝子変異やALK遺伝子転座のない非小細胞肺癌におけるペムブロリズマブ単剤治療の適応を決定するために行うよう勧められる。(グレードA)
b.PD-L1 IHC検査は,EGFR遺伝子変異もしくはALK遺伝子転座を有する非小細胞肺癌の分子標的薬既治療例におけるペムブロリズマブ単剤治療の適応を決定するために行うよう勧められる。(グレードC1)
c.PD-L1 IHC検査は,承認された体外診断薬を用いて行うよう勧められる。(グレードA)
d.PD-L1 IHC検査は,腫瘍細胞が少なくとも100個以上含まれる検体を用いて行うよう勧められる。(グレードA)
e.既治療例に対するPD-L1 IHC検査に用いられる組織検体は,診断時など前治療以前の検体,前治療耐性後に再生検された検体,のいずれの検体でも用いることができる。(グレードC1)
f.PD-L1 IHC検査は,非扁平上皮非小細胞肺癌におけるニボルマブ単剤治療の適応を決定するための参考にしてもよい。(グレードC1)
- a・b.
- PD-L1 IHC検査にて腫瘍細胞の50%以上が陽性と判定されたEGFR遺伝子変異やALK遺伝子転座のないⅣ期の未治療非小細胞肺癌患者を対象としたペムブロリズマブ単剤と細胞障害性抗癌剤とを比較した第Ⅲ相試験にて,ペムブロリズマブ単剤群でPFS,OSともに有意に延長した38)。また,PD-L1 IHC検査にて腫瘍細胞の1%以上が陽性と判定された既治療非小細胞肺癌患者を対象としたペムブロリズマブ単剤とドセタキセルとを比較した第Ⅲ相試験にて,ペムブロリズマブ単剤群でPFS,OSともに有意に延長した39)。これらの結果より,PD-L1 IHC検査はペムブロリズマブによる治療の適否を決定するために行うよう勧められる。EGFR遺伝子変異およびALK融合遺伝子陽性例は,上述の既治療を対象とした試験で対象症例に含まれている。サブセット解析にてEGFR遺伝子変異陽性例では,PFS,OSともに有意差は消失していた39)。しかしながら明確な結論には至っていないと判断し,推奨グレードC1とした。
- c.
- 上述の2つの第Ⅲ相試験では,PD-L1 IHC検査に22C3 PharmDx assay(Dako社)が用いられている38)39)。本抗体はペムブロリズマブのコンパニオン診断薬として承認されており,ペムブロリズマブの添付文書においても明記されている。また,PD-L1 IHC検査の抗体は,各社より複数販売されているが,非小細胞肺癌39検体を用いて22C3,28-8,SP142,SP263の4種類の抗体でのPD-L1 IHC検査を比較した検討では,評価が可能であった38例中14例(37%)で異なる判定となった40)。このようにコンパニオン診断薬以外の抗体を使用した場合に,適切な患者選択がなされない可能性がある。
- d.
- ペムブロリズマブのコンパニオン診断薬では,判定基準として100個以上の腫瘍細胞を評価し判定される。
- e.
- 上述の既治療例を対象とした第Ⅲ相試験では,当初は前治療耐性後の再生検で得られた腫瘍組織にてPD-L1 IHC検査が行われた。試験途中から診断時など前治療以前の腫瘍組織を用いることも許容された39)。このような経緯から行われた保存組織と再生検組織とを比較するサブセット解析では,いずれもペムブロリズマブ単剤群でPFS,OSともに有意に延長した39)。この結果からは,PD-L1 IHC検査で陽性と判定されれば腫瘍検体の採取時期は効果に影響しないものと考えられる。しかしながら,一部の非小細胞肺癌におけるPD-L1発現には,時間的・空間的な変動があることを指摘する報告もみられる41)。これらのことより,明確な結論には至っていないと判断し,推奨グレードをC1とした。
- f.
- 既治療進行肺扁平上皮癌患者を対象とした,もしくは既治療非扁平上皮非小細胞肺癌患者を対象としたニボルマブ単剤とドセタキセルとを比較した第Ⅲ相試験にて,ニボルマブ単剤群でOSの有意な延長を認めた42)43)。これらの試験では22C3 PharmDx assay(Dako社)を用いたPD-L1 IHC検査が行われ,副次的評価項目としてPD-L1発現レベルの1%,5%,10%のそれぞれで2群に分け,PD-L1発現とOS,PFS,RRとの関連を解析している。肺扁平上皮癌患者を対象とした試験では,PD-L1の発現とOS,PFS,RRとの間に有意な差は得られなかった42)。非扁平上皮非小細胞肺癌患者を対象とした試験では,有意にOS,PFSの延長,RRの上昇を認めた43)。これらのことよりコンプリメンタリー診断薬である22C3 PharmDx assay(Dako社)を用いたPD-L1 IHC検査は,非扁平上皮非小細胞肺癌におけるニボルマブ単剤治療の適否を決定するための参考としてもよい。
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